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病理科主要通過制病理切片完成免疫組化實驗來診斷疾病。用來制作病理切片的組織樣有括宮頸、痰、胸腹水及尿液等。病理切片有石蠟切片和冰凍切片兩種，常見的是石蠟切片。
1 取材、固定：獲取的組織樣本經(jīng)離心等處理后加入固定液，病理切片最常使用的固定液為10%福爾馬林（4%甲醛）或10%磷酸緩沖福爾馬林。固定液的用量一般為樣本的20倍左右。
2洗滌、脫水、透明：固定后的組織材料需除去留在組織內(nèi)的固定液及其結(jié)晶沉淀，否則會影響后期的染色效果。因此先用自動脫水機或乙醇對樣本進行脫水。純酒精不能與石蠟相溶，還需用能與酒精和石蠟相溶的媒浸液，替換出組織內(nèi)的酒精，這種媒浸液稱為透明劑。常見的透明劑有有二甲苯、苯、氯仿、正丁醇等。
3浸蠟與包埋：把樣本放入盛有石蠟液的石蠟包埋機中進行包埋，在包埋機中經(jīng)冷卻制成固體樣本。
4切片：包埋好的蠟塊用刀片修成規(guī)整的四棱臺，以少許熱蠟液將其底部迅速貼附于小木塊上，夾在石蠟切片機的蠟塊鉗內(nèi)，使蠟塊切面與切片刀刃平行，進行石蠟切片。
5貼片與烤片：在潔凈的載玻片上涂抹薄層蛋白甘油，再將一定長度蠟帶（連續(xù)切片）或用刀片斷開成單個蠟片于溫水（45℃左右）中展平后，撈至玻片上鋪正，烘干或晾干。
6切片脫蠟與水化：干燥后的切片需脫蠟及水化才能在水溶性染液中進行染色。用二甲苯脫蠟，再逐級經(jīng)純酒精及梯度酒精直至蒸餾水。如果染料配制于酒精中，則將切片移至與酒精近似濃度時，即可染色。
7抗原修復(fù)：由于之前的化學(xué)試劑對抗原進行了封閉，熱作用使抗原肽鏈扭曲會導(dǎo)致免疫組化染色不能顯示，因此進項抗原修復(fù)。把玻片放在檸檬酸緩沖液（95-99℃）10分鐘，冷卻后放在EDTA溶液（95-99℃）15分鐘，然后直接放在10 mM TE/1 mM EDTA溶液中（95-99℃）18分鐘，最后用胃蛋白酶37℃消化30分鐘。
8染色、觀察：加入抗體后4℃孵育過夜，染色。染色成功后用蒸餾水進行沖洗，脫水后蓋上蓋玻片放在顯微鏡下觀察。
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